بهبود تولید پروتئین‌های نوترکیب در باکتری اشرشیاکلی

Publish Year: 1398
نوع سند: مقاله ژورنالی
زبان: Persian
View: 518

This Paper With 20 Page And PDF Format Ready To Download

  • Certificate
  • من نویسنده این مقاله هستم

استخراج به نرم افزارهای پژوهشی:

لینک ثابت به این Paper:

شناسه ملی سند علمی:

JR_NCMBJ-10-38_001

تاریخ نمایه سازی: 16 اسفند 1399

Abstract:

امروزه با استفاده از مهندسی ژنتیک، پروتئین‌های نوترکیب می‌توانند در حجم انبوه، کیفیت مطلوب و هزینه پایین برای پاسخگویی به خواسته‌های صنایع مختلف تولید شوند. پروتئین‌های نوترکیب می‌توانند در روش‌های بیانی مختلفی نظیر سیستم‌های بیانی عاری از سلول یا بر پایه سلول­های پروکاریوتی یا یوکاروتی بیان شوند. با توجه به مزایای استفاده از سلول­های پروکاریوتی، یکی از سیستم­های متداول برای تولید پروتئین­های نوترکیب، استفاده از باکتری اشریشیاکلی (E.coli) است. هدف از مطالعه حاضر بررسی دقیق­تر بیان پروتئین نوترکیب در باکتری E. coli و ارائه راه­کارهای مناسب برای دستیابی به کشت با تراکم سلولی بالا و با قابلیت بیان بیشینه است. از این رو با مطالعه حدود 63 مقاله چاپ شده در زمینه مهندسی ژنتیک، سیستم­های بیانی گوناگون برای تولید پروتئین­های نوترکیب معرفی و سپس راهکارهای عمومی برای بیان بالاتر آنها بررسی شدند. رویکردهای متعددی برای افزایش بازدهی و حلالیت به­کار گرفته شده است؛ تغییر سرعت سنتز پروتئین­ها، استفاده از پروتئین­های اتصالی، موتاسیون در پروتئین هدف، بیان هم­زمان چاپرون­های ملکولی و بهینه سازی شرایط کشت از جمله روش­هایی است که در این مطالعه ارزیابی شده­اند. کلونینگ مجازی در بستر توسعه روش­های نرم­افزاری و پایگاه­های اطلاعاتی غنی­تر به کمک ابزار و آزمون­های آزمایشگاهی آمده و توانسته است به رفع محدودیت­های بیان نوترکیب پروتئین­ها در میزبان­هایی با سیستم بیانی متفاوت منجر شود.

Authors

شکوفه رضایی

گروه زیست فناوری میکروبی، پردیس علوم و فناوریهای نوین ، دانشگاه سمنان، سمنان، ایران.

احمدفرهاد طالبی

Department of Microbial Biotechnology, Faculty of new Sciences and Technologies, Semnan University, Semnan, Iran

مراجع و منابع این Paper:

لیست زیر مراجع و منابع استفاده شده در این Paper را نمایش می دهد. این مراجع به صورت کاملا ماشینی و بر اساس هوش مصنوعی استخراج شده اند و لذا ممکن است دارای اشکالاتی باشند که به مرور زمان دقت استخراج این محتوا افزایش می یابد. مراجعی که مقالات مربوط به آنها در سیویلیکا نمایه شده و پیدا شده اند، به خود Paper لینک شده اند :
  • 1. Kabirnataj S, Nematzadeh G, Zolala J, Talebi AF. High-efficient ...
  • 2. Yokoyama S. Protein expression systems for structural genomics and ...
  • 3. Goudarzi Z, Shojaosadati SA, Sajedi RH, Maghsoudi A. Optimization ...
  • 4. Sawers G, Jarsch M. Alternative regulation principles for the ...
  • 5. Marino M. Expression systems for heterologous protein production. BioPharm. ...
  • 6. Schmidt F. Recombinant expression systems in the pharmaceutical industry. ...
  • 7. Hammarström M, Hellgren N, van den Berg S, Berglund ...
  • 8. Fakruddin M, Mohammad Mazumdar R, Bin Mannan KS, Chowdhury ...
  • 9. Klumpp S. Growth-rate dependence reveals design principles of plasmid ...
  • 10. Reece RJ. Analysis of genes and genomes: Hoboken, NJ: ...
  • 11. Brown TA. Gene cloning and DNA analysis: an introduction: ...
  • 12. Rosano GL, Ceccarelli EA. Recombinant protein expression in Escherichia ...
  • 13. Jia B, Jeon CO. High-throughput recombinant protein expression in ...
  • 14. Vahedi F, Talebi A, Ghorbani E, Behroozikhah A, Shahriari ...
  • 15. Weiner MP, Anderson C, Jerpseth B, Wells S, Johnson-Browne ...
  • 16. Terpe K. Overview of bacterial expression systems for heterologous ...
  • 17. Young CL, Britton ZT, Robinson AS. Recombinant protein expression ...
  • 18. Vincentelli R, Cimino A, Geerlof A, Kubo A, Satou ...
  • 19. Khandelwal P. Lab-to Process-Scale Protein Purification: An IMAC Resin ...
  • 20. Terpe K. Overview of tag protein fusions: from molecular ...
  • 21. Hirose S, Noguchi T. ESPRESSO: a system for estimating ...
  • 22. Diaz AA, Tomba E, Lennarson R, Richard R, Bagajewicz ...
  • 23. Gatti‐Lafranconi P, Natalello A, Ami D, Doglia SM, Lotti ...
  • 24. Malakar P, Venkatesh K. Characterization of burden on growth ...
  • 25. Hannig G, Makrides SC. Strategies for optimizing heterologous protein. ...
  • 26. Rosen R, Biran D, Gur E, Becher D, Hecker ...
  • 27. Govers SK, Mortier J, Adam A, Aertsen A. Protein ...
  • 28. Tobias JW, Shrader TE, Rocap G, Varshavsky A. The ...
  • 29. Qile M, Ji Y, Houtman MJ, Veldhuis M, Romunde ...
  • 30. Khosrowabadi E, Takalloo Z, Sajedi RH, Khajeh K. Improving ...
  • 31. Schumann W, Ferreira LCS. Production of recombinant proteins in ...
  • 32. Tsai C-H, Ho Y-H, Sung T-C, Wu W-F, Chen ...
  • 33. Mokry DZ, Abrahão J, Ramos CH. Disaggregases, molecular chaperones ...
  • 34. Xu X, Liang K, Niu Y, Shen Y, Wan ...
  • 35. Wang Z, Zhang M, Lv X, Fan J, Zhang ...
  • 36. Santra M, Dill KA, de Graff AM. How Do ...
  • 37. Fassler R, Edinger N, Rimon O, Reichmann D. Defining ...
  • 38. Deville C, Carroni M, Franke KB, Topf M, Bukau ...
  • 39. Voulgaridou G-P, Mantso T, Chlichlia K, Panayiotidis MI, Pappa ...
  • 40. Zhu S, Gao B, Aumelas A, del Carmen Rodríguez ...
  • 41. Van Dijk E, Hoogeveen A, Abeln S. The hydrophobic ...
  • 42. Vera A, González‐Montalbán N, Arís A, Villaverde A. The ...
  • 43. San-Miguel T, Pérez-Bermúdez P, Gavidia I. Production of soluble ...
  • 44. Strocchi M, Ferrer M, Timmis KN, Golyshin PN. Low ...
  • 45. Ferrer M, Chernikova TN, Yakimov MM, Golyshin PN, Timmis ...
  • 46. Song J-A, Lee D-S, Park J-S, Han K-Y, Lee ...
  • 47. Nallamsetty S, Waugh DS. A generic protocol for the ...
  • 48. Raran-Kurussi S, Waugh DS. Expression and purification of recombinant ...
  • 49. Gellissen G. Production of recombinant proteins: Novel microbial and ...
  • 50. Raran‐Kurussi S, Waugh DS. Unrelated solubility‐enhancing fusion partners MBP ...
  • 51. Li K, Jiang T, Yu B, Wang L, Gao ...
  • 52. Raivio TL, Silhavy TJ. Periplasmic stress and ECF sigma ...
  • 53. Hatahet F, Boyd D, Beckwith J. Disulfide bond formation ...
  • 54. Berkmen M. Production of disulfide-bonded proteins in Escherichia coli. ...
  • 55. Makino T, Skretas G, Georgiou G. Strain engineering for ...
  • 56. Elkins KM. An in silico DNA cloning experiment for ...
  • 57. Mondal TK, Ganie SA, Niraj RRK, Rana MK. Cloning ...
  • 58. Padaria JC, Vishwakarma H, Biswas K, Jasrotia RS, Singh ...
  • 59. Han W, Ding P, Xu M, Wang L, Rui ...
  • 60. Negi B, Salvi P, Bhatt D, Majee M, Arora ...
  • 61. Milne CB, Kim PJ, Eddy JA, Price ND. Accomplishments ...
  • 62. Brassac J, Blattner FR. Species-level phylogeny and polyploid relationships ...
  • 63. Veenstra JA, Rombauts S, Grbić M. In silico cloning ...
  • 1. Kabirnataj S, Nematzadeh G, Zolala J, Talebi AF. High-efficient ...
  • 2. Yokoyama S. Protein expression systems for structural genomics and ...
  • 3. Goudarzi Z, Shojaosadati SA, Sajedi RH, Maghsoudi A. Optimization ...
  • 4. Sawers G, Jarsch M. Alternative regulation principles for the ...
  • 5. Marino M. Expression systems for heterologous protein production. BioPharm. ...
  • 6. Schmidt F. Recombinant expression systems in the pharmaceutical industry. ...
  • 7. Hammarström M, Hellgren N, van den Berg S, Berglund ...
  • 8. Fakruddin M, Mohammad Mazumdar R, Bin Mannan KS, Chowdhury ...
  • 9. Klumpp S. Growth-rate dependence reveals design principles of plasmid ...
  • 10. Reece RJ. Analysis of genes and genomes: Hoboken, NJ: ...
  • 11. Brown TA. Gene cloning and DNA analysis: an introduction: ...
  • 12. Rosano GL, Ceccarelli EA. Recombinant protein expression in Escherichia ...
  • 13. Jia B, Jeon CO. High-throughput recombinant protein expression in ...
  • 14. Vahedi F, Talebi A, Ghorbani E, Behroozikhah A, Shahriari ...
  • 15. Weiner MP, Anderson C, Jerpseth B, Wells S, Johnson-Browne ...
  • 16. Terpe K. Overview of bacterial expression systems for heterologous ...
  • 17. Young CL, Britton ZT, Robinson AS. Recombinant protein expression ...
  • 18. Vincentelli R, Cimino A, Geerlof A, Kubo A, Satou ...
  • 19. Khandelwal P. Lab-to Process-Scale Protein Purification: An IMAC Resin ...
  • 20. Terpe K. Overview of tag protein fusions: from molecular ...
  • 21. Hirose S, Noguchi T. ESPRESSO: a system for estimating ...
  • 22. Diaz AA, Tomba E, Lennarson R, Richard R, Bagajewicz ...
  • 23. Gatti‐Lafranconi P, Natalello A, Ami D, Doglia SM, Lotti ...
  • 24. Malakar P, Venkatesh K. Characterization of burden on growth ...
  • 25. Hannig G, Makrides SC. Strategies for optimizing heterologous protein. ...
  • 26. Rosen R, Biran D, Gur E, Becher D, Hecker ...
  • 27. Govers SK, Mortier J, Adam A, Aertsen A. Protein ...
  • 28. Tobias JW, Shrader TE, Rocap G, Varshavsky A. The ...
  • 29. Qile M, Ji Y, Houtman MJ, Veldhuis M, Romunde ...
  • 30. Khosrowabadi E, Takalloo Z, Sajedi RH, Khajeh K. Improving ...
  • 31. Schumann W, Ferreira LCS. Production of recombinant proteins in ...
  • 32. Tsai C-H, Ho Y-H, Sung T-C, Wu W-F, Chen ...
  • 33. Mokry DZ, Abrahão J, Ramos CH. Disaggregases, molecular chaperones ...
  • 34. Xu X, Liang K, Niu Y, Shen Y, Wan ...
  • 35. Wang Z, Zhang M, Lv X, Fan J, Zhang ...
  • 36. Santra M, Dill KA, de Graff AM. How Do ...
  • 37. Fassler R, Edinger N, Rimon O, Reichmann D. Defining ...
  • 38. Deville C, Carroni M, Franke KB, Topf M, Bukau ...
  • 39. Voulgaridou G-P, Mantso T, Chlichlia K, Panayiotidis MI, Pappa ...
  • 40. Zhu S, Gao B, Aumelas A, del Carmen Rodríguez ...
  • 41. Van Dijk E, Hoogeveen A, Abeln S. The hydrophobic ...
  • 42. Vera A, González‐Montalbán N, Arís A, Villaverde A. The ...
  • 43. San-Miguel T, Pérez-Bermúdez P, Gavidia I. Production of soluble ...
  • 44. Strocchi M, Ferrer M, Timmis KN, Golyshin PN. Low ...
  • 45. Ferrer M, Chernikova TN, Yakimov MM, Golyshin PN, Timmis ...
  • 46. Song J-A, Lee D-S, Park J-S, Han K-Y, Lee ...
  • 47. Nallamsetty S, Waugh DS. A generic protocol for the ...
  • 48. Raran-Kurussi S, Waugh DS. Expression and purification of recombinant ...
  • 49. Gellissen G. Production of recombinant proteins: Novel microbial and ...
  • 50. Raran‐Kurussi S, Waugh DS. Unrelated solubility‐enhancing fusion partners MBP ...
  • 51. Li K, Jiang T, Yu B, Wang L, Gao ...
  • 52. Raivio TL, Silhavy TJ. Periplasmic stress and ECF sigma ...
  • 53. Hatahet F, Boyd D, Beckwith J. Disulfide bond formation ...
  • 54. Berkmen M. Production of disulfide-bonded proteins in Escherichia coli. ...
  • 55. Makino T, Skretas G, Georgiou G. Strain engineering for ...
  • 56. Elkins KM. An in silico DNA cloning experiment for ...
  • 57. Mondal TK, Ganie SA, Niraj RRK, Rana MK. Cloning ...
  • 58. Padaria JC, Vishwakarma H, Biswas K, Jasrotia RS, Singh ...
  • 59. Han W, Ding P, Xu M, Wang L, Rui ...
  • 60. Negi B, Salvi P, Bhatt D, Majee M, Arora ...
  • 61. Milne CB, Kim PJ, Eddy JA, Price ND. Accomplishments ...
  • 62. Brassac J, Blattner FR. Species-level phylogeny and polyploid relationships ...
  • 63. Veenstra JA, Rombauts S, Grbić M. In silico cloning ...
  • نمایش کامل مراجع