باززایی دو رقم تجاری نیشکر CP48-103 و CP69-1062 از ریزنمونه های برگ انتهایی

Publish Year: 1394
نوع سند: مقاله ژورنالی
زبان: Persian
View: 346

This Paper With 20 Page And PDF Format Ready To Download

  • Certificate
  • من نویسنده این مقاله هستم

استخراج به نرم افزارهای پژوهشی:

لینک ثابت به این Paper:

شناسه ملی سند علمی:

JR_JOAGK-7-1_010

تاریخ نمایه سازی: 20 خرداد 1398

Abstract:

نیشکر یکی از مهم­ترین گیاهان صنعتی کشور است. با توجه به عدم گلدهی این گیاه در شرایط مزرعه­ای در مناطق نیشکرخیز ایران، مهندسی ژنتیک و استفاده از روش­های انتقال ژن از جمله راهکارهای مهم جهت بهبود صفات زراعی این گیاه است. استفاده از این تکنیک­ها در اصلاح نیشکر نیازمند بهینه­سازی باززایی این گیاه از بافتهای مختلف گیاهی از جمله برگ است. در این تحقیق تلاش شد تا کلیه مراحل کشت بافت دو رقم تجاری نیشکر CP48-10 و CP69-1062 از برگ­های پیچیده انتهایی ساقه بهینه­سازی شود. برای تهیه نمونه­های مناسب کشت، دو روش برش مورد بررسی قرار گرفت که روش برش استوانه از وسط، در مورد برگ­های پیچیده انتهایی نسبت به تهیه­ رینگ از نتایج بهتری برخوردار بود. استفاده از محیط کشت MS جامد با 3 میلی­گرم در لیتر هورمون 2,4-D بهترین نتایج را برای تولید کالوس در­پی داشت. به منظور تولید شاخساره از کالوس­ها، ترکیب هورمونی 1 میلی­گرم در لیتر BAP به همراه 2 میلی­گرم در لیتر کینتین بهترین پاسخ­دهی را داشت. گیاهچه­های تولید شده، در محیط MS حاوی 5 میلی­گرم در لیتر  IBA به همراه 1 میلی­گرم در لیتر کینتین و همین­طور تیمار 3 میلی­گرم در لیتر  NAAبه همراه 3 گرم در لیتر زغال فعال، بهترین شرایط برای ریشه­دهی را داشتند. در تیمارهایی که از زغال فعال استفاده شده بود، گیاهچه­های حاصل از نظر صفات اندازه­گیری شده شامل: زمان ریشه زایی، طول ریشه و تعداد گیاهان به ریشه رفته نتایج بهتری را نسبت به عدم استفاده از آن نشان دادند.

مراجع و منابع این Paper:

لیست زیر مراجع و منابع استفاده شده در این Paper را نمایش می دهد. این مراجع به صورت کاملا ماشینی و بر اساس هوش مصنوعی استخراج شده اند و لذا ممکن است دارای اشکالاتی باشند که به مرور زمان دقت استخراج این محتوا افزایش می یابد. مراجعی که مقالات مربوط به آنها در سیویلیکا نمایه شده و پیدا شده اند، به خود Paper لینک شده اند :
  • Ali A, Naz S, Siddiqui FA (2008). Rapid clonal multiplication ...
  • Arvinth S, Arvinth J, Srikanth S, Arun RK, Selvakesavan N, ...
  • Ather A, Khan S, Rehman A, Nazir M (2009). Optimization ...
  • Behera KK, Sahoo S (2009). Rapid In vitro Micro propagation ...
  • Biradar S, Biradar DP, Patil VC, Patil SS, Kambar NS ...
  • Burner DM, Grisham MP (1995). Induction and stability of phenotypic ...
  • Cheng PK, Lakshmanan P, and Swarup S (2001). High frequency ...
  • Damasco OP, Graham GC, Henry RJ, Adkins SW, Smith MK, ...
  • Daneshvar MH (2007). Modification of surface sterilization process and callus ...
  • Farsi M, Zolala J (2003). Introduction to plant biotechnology. Ferdowsi ...
  • Gallo-Meagher M, English RG, Abouzid A (2000). Thidiazuron stimulates shoot ...
  • Gandonou C, Errabil TA, Idaomar M (2005). Effect of genotype ...
  • Hamudi J, Parvizi almani M, Bani Abasi N (2005). In ...
  • Heinz D J, Mee GWP (1969). Plant differentiation from callus ...
  • Karim MZ, Amin, MN, Hossain MA, Islam S, Hossin F, ...
  • Khalil SM (2002). Regeneration via somatic embryogenesis and microprojectile-mediated co-transformation ...
  • Krishnamurthi M (1986). Sugarcane improvement through tissue culture process, American ...
  • Liu MC, Chen WH (1984). Tissue and cell culture, an ...
  • Ono Y, Takahata Y, Kaizuma N (1994). Effect of genotype ...
  • Pierik RLM (1997). In vitro Culture of higher plants. Kluwer ...
  • Ramanand N, Kureel N, Subhanand M, Lal S, Singh B ...
  • Ramin AA (2003). In Vitro propagation of sugarcane (Saccharum officinarum). ...
  • Sadat Sh, Bihamta M, Emam SA (2008). Effect of plant ...
  • Sarvari M, Hoseinzade A (2000). Effect of genotype, tissue culture ...
  • Schenk RU, Hilderandt AC (1972). Medium and techniques for induction ...
  • Silvarolla MB (1992). Plant genomic alterations due to tissue culture. ...
  • Taiz L, Zeiger E (1998). Plant Physiology.2nd ed., Sinauer Associates, ...
  • Thrope TA (1981). Plant Tissue Culture: Method and Applications in ...
  • نمایش کامل مراجع