تاثیر خردل گوگردی بر آنزیم های سیستم آنتی اکسیدانی در بافت های مختلف موش صحرایی

Publish Year: 1394
نوع سند: مقاله ژورنالی
زبان: Persian
View: 154

This Paper With 13 Page And PDF Format Ready To Download

  • Certificate
  • من نویسنده این مقاله هستم

استخراج به نرم افزارهای پژوهشی:

لینک ثابت به این Paper:

شناسه ملی سند علمی:

JR_MUQ-9-3_003

تاریخ نمایه سازی: 2 آبان 1401

Abstract:

زمینه و هدف: خردل گوگردی از عوامل لیپوفیل تاول زا است که با آلکیله کردن ماکرومولکول های سلولی مانند DNA ، RNA و پروتئین ها باعث مرگ سلولی در بافت های مختلف می شود. باوجود مطالعات بسیار، مکانیسم عمل خردل به صورت کامل شناخته نشده است. در این مطالعه اثر خردل گوگردی بر آنزیم های سیستم آنتی اکسیدان بافت های مختلف موش صحرایی بررسی شد. روش بررسی: موش های صحرایی نر نژاد ویستار به صورت تصادفی در هفت گروه قرار گرفتند. گروه کنترل (دریافت کننده دی متیل سولفوکسید، به عنوان حلال) و گروه های ۷-۲ به عنوان گروه تجربی، خردل گوگردی (دوزهای ۸۰-۱ میلی گرم بر کیلوگرم وزن بدن) را یک بار به صورت داخل صفاقی دریافت کردند. ۲۴ ساعت بعد از تزریق، حیوانات بیهوش و بافت های کلیه، ریه و قلب آنها جدا شد. سپس خونگیری از قلب حیوانات به عمل آمد و پلاسما و اریتروسی ت ها تهیه گردید. فعالیت آنزیم های سوپراکسید دیسموتاز ( SOD )، کاتالاز ( CAT )، گلوتاتیون پراکسیداز ( GPx )، گلوتاتیون ردوکتاز ( GR ) و گلوتاتیون S - ترانسفراز ( GST ) در بافت های مختلف به وسیله روش های بیوشیمیایی تعیین گردید. داده ها با استفاده از آزمون آنالیز واریانس یک طرفه و تست توکی تجزیه و تحلیل شدند. سطح معنی داری، ۰۵/۰> p در نظر گرفته شد . یافته ها: در این مطالعه، افزایش فعالیت آنزیم های SOD و GST در ریه و GST در قلب با دوزهای کمتر از ۲۰ میلی گرم بر کیلوگرم خردل مشاهده گردید، درحالی که فعالیت همه آنزیم های آنتی اکسیدان در بافت های مختلف در دوزهای بالاتر خردل کاهش یافت. نتیجه گیری: خردل گوگردی ب ر سیستم دفاعی آنتی اکسیدان در همه بافت ها در یک طرح وابسته به دوز تاثیر می گذارد. افزایش فعالیت آنزیم های آنتی اکسیدان در غلظت های کمتر از ۲۰ میلی گرم بر کیلوگرم خردل ناشی از پاسخ جبرانی برای پاک سازی رادیکال های آزاد و کاهش فعالیت این آنزیم ها در غلظت های بالاتر، نشان دهنده استرس اکسیداتیو و مرگ سلولی در بافت ها می باشد.

Authors

مهوش جعفری

دانشگاه علوم پزشکی قم

حسینعلی مهرانی

دانشگاه علوم پزشکی بقیه ا...(عج)

علی زارعی

مرکز تحقیقات پزشکی و مهندسی جانبازان

رضا رضایی

دانشگاه علوم پزشکی بقیه ا...(عج)

جواد رسولی

دانشگاه علوم پزشکی بقیه ا...(عج)

مراجع و منابع این Paper:

لیست زیر مراجع و منابع استفاده شده در این Paper را نمایش می دهد. این مراجع به صورت کاملا ماشینی و بر اساس هوش مصنوعی استخراج شده اند و لذا ممکن است دارای اشکالاتی باشند که به مرور زمان دقت استخراج این محتوا افزایش می یابد. مراجعی که مقالات مربوط به آنها در سیویلیکا نمایه شده و پیدا شده اند، به خود Paper لینک شده اند :
  • Behravan E, Moallem SA, Khateri S, Maraghi E, Jowsey P, ...
  • Batal M, Boudry I, Mouret S, Clery-Barraud C, Wartelle J, ...
  • Chauhan S, D’Cruz R, Faruqi S, Singh KK, Varma S, ...
  • Ghanei M, Poursaleh Z, Harandi AA, Emadi SE, Emadi SN. ...
  • Limon-Pacheco J, Gonsebatt ME. The role of antioxidants and antioxidant-related ...
  • Mates JM, Perez-Gomez C, Núñez de Castro I. Antioxidant enzymes ...
  • McCord JM. Human disease, free radicals, and the oxidant/antioxidant balance. ...
  • Naghii MR. Sulfur mustard intoxication, oxidative stress, and antioxidants. Mil ...
  • Brimfield AA, Soni SD, Trimmer KA, Zottola MA, Sweeney RE, ...
  • Pohanka M, Sobotka J, Jilkova M, Stetina R. Oxidative stress ...
  • Pal A, Tewari-Singh N, Gu M, Agarwal C, Huang J, ...
  • Pohanka M, Sobotka J, Stetina R.Sulfur mustard induced oxidative stress ...
  • Laskin JD, Black AT, Jan YH, Sinko PJ, Heindel ND, ...
  • Husain K, Dube SN, Sugendran K, Sing HR, Das Gupta ...
  • Buczynski A, Gnitecki W. Effect of mustard gas on superoxide ...
  • Jafari M. Dose- and time-dependent effects of sulfur mustard on ...
  • Jafari M, Pirzad G, Zaree A, Saberi M. Study of ...
  • Mirbagheri L, Habibi Roudkenar M, Imani Fooladi AA, Ghanei M, ...
  • Pohanka M, Sobotka J, Svobodova H, Stetina R. Sulfur mustard ...
  • Tekiner A, Yucel D, Bayar MA, Yucel O, Erdem Y, ...
  • Paoletti F, Mocali A. Determination of superoxide dismutase activity by ...
  • Cohen G, Dembiec D, Marcus J. Measurement of catalase activity ...
  • Paglia DE, Valentine WN. Studies on the quantitative and qualitative ...
  • Carlberg I, Mannervik B. Glutathion reductase. Methods Enzymol ۱۹۸۵;۱۱۳:۴۸۴-۹۵ ...
  • Habig WH, Jakoby WB. Glutathione S-transferases (rat and human). Methods ...
  • Bradford MM. A rapid and sensitive method for the quantitation ...
  • Van Kampen EJ, Zljlstra WG. Determination of hemoglobin and its ...
  • Nourani MR, Azimzadeh S, Ghanei M, ImaniFooladi AA.Expression of glutathione ...
  • Haberle D, Wahllander A, Sies H, Linke I, Lachenmaier C. ...
  • Blum J, Fridovich I. Inactivation of glutathione peroxidase by superoxide ...
  • Kono Y, Fridorich I. Superoxide radical inhibits catalase. J Biol ...
  • Meister A, Anderson ME. Glutathione. Annu Rev Biochem ۱۹۸۳;۵۲:۷۱۱-۶۰ ...
  • Jafari M, Ghanei M. Evaluation of plasma, erythrocytes, and brochoalveolar ...
  • Nicholls P, Schonbaum GR. Catalases. In: Boyer PD, Lardy H, ...
  • Elsayed NM, Omaye ST. Biochemical changes in mouse lung after ...
  • Bishop ML, Duben-Engelkirk Jl, Fody Ep. Clinical chemistry. ۴th ed. ...
  • Jones DP, Kennedy FG. Function of glutathione peroxidase in decomposition ...
  • Eldad A, Ben Meir P, Breiterman S, Chauat M, Shafran ...
  • McCord JM. Oxygen–derived free radicals in post–ischemic tissue injury. N ...
  • Clemens MR, Waller HD. Lipid peroxidation in erythrocytes. Chem Phys ...
  • Weglicki WB, Dickens BF, Tong Mak IT. Enhanced lysosomal phospholipid ...
  • Pradnan D, Weser M, Lumley-Sapnski K, Frazier D, Kemper S, ...
  • Pigeolet E, Corbisier P, Houbion A, Lambert D, Michiels C, ...
  • Omaye ST, Elsayed NM, Klain GJ, Korte DW Jr. Metabolic ...
  • Elsayed NM, Omaye ST, Klain GJ, Inase JJ, Dahlberg ET, ...
  • Vijayaraghavan R, Gautam A, Sharma M, Satish HT, Pant SC, ...
  • Gautam A,Vijayaraghavan R. Prophylactic effect of gossypin against percutaneously administered ...
  • نمایش کامل مراجع