تاثیر ژنتیک، نوع ریزنمونه، تنظیم کننده   رشد گیاهی و بستر کشت بر باززایی درون شیشه  ای رقم های تجاری ارکیده فالانوپسیس

فاطمه بیدرنامنی; عبدالرحمن رحیمیان بوگر; سید نجم الدین مرتضوی

تاثیر ژنتیک، نوع ریزنمونه، تنظیم کننده رشد گیاهی و بستر کشت بر باززایی درون شیشه ای رقم های تجاری ارکیده فالانوپسیس

Publish place: Flower and Ornamental Plants، Vol: 6، Issue: 2

Publish Year: 1400

Type: Journal paper

Language: Persian

This Paper With 15 Page And PDF Format Ready To Download

DOWNLOAD Paper

Certificate
I'm the author of the paper

Export:

Link to this Paper:

https://civilica.com/doc/1424139

Document National Code:

JR_FLOWER-6-2_004

Index date: 6 April 2022

تاثیر ژنتیک، نوع ریزنمونه، تنظیم کننده رشد گیاهی و بستر کشت بر باززایی درون شیشه ای رقم های تجاری ارکیده فالانوپسیس abstract

ارکیده فالانوپسیس (Phalaenopsis)، محبوبترین جنس تیره ثعلب ها می باشد که به دلیل داشتن گل های پروانه ای شکل و جذاب، بازار پسندی بالایی دارد. پژوهش حاضر با هدف بررسی اثر ژنتیک، ریزنمونه، تنظیم کننده های رشد و بستر کشت بر افزایش درون شیشه ای ارکیده فالانوپسیس انجام شد. تیمارها شامل چهار تیمار تنظیم کننده رشد بنزیل آدنین (۲ و ۴ میلی گرم بر لیتر BA) و ایندول بوتیریک اسید (۵/۰ و ۱ میلی گرم در لیتر IBA)، دو محیط کشت MS و Chen، دو ریزنمونه برگ و ساقه، و پنج رقم تجاری فالانوپسیس بود. عوامل مورد بررسی تاثیر معنی داری بر زمان تشکیل سرآغازه های برگ و ریشه، ایجاد پداژه نما، شمار برگ و ریشه داشتند. کمترین زمان لازم برای تشکیل نخستین سرآغازه های برگ و ریشه، مربوط به رقم های Nottingham و Dubrovnik، تیمار ۲ میلی گرم بر لیتر BA ترکیب با IBAبا غلظت های ۵/۰ و ۱ میلی گرم بر لیتر، و محیط کشت Chen بود. زمان تشکیل سرآغازه های برگ در ریزنمونه های برگی در مقایسه با ریزنمونه های ساقه، به طور معنی داری کمتر بود. ریزنمونه های برگی، پداژه نمای بیشتری نسبت به ریزنمونه های ساقه تولید کردند. در رقم Nottingham، تیمار BA+IBA با نسبت ۲ به ۱ میلی گرم بر لیتر و محیط کشت Chen بیشترین تاثیر را بر افزایش شمار پداژه نماها داشتند. افزون بر این، شمار برگ و ریشه در گیاهچه های تولید شده در شرایط درون شیشه ای، به طور معنی داری زیر تاثیر عوامل مختلف قرار گرفت به طوری که گیاهچه های رقم Dubrovnik شمار برگ بیشتری و گیاهچه های رقم Nottingham شمار ریشه بیشتری در مقایسه با سایر رقم ها داشتند. بیشترین شمار برگ در تیمار BA با غلظت ۲ میلی گرم در لیتر به همراه IBA با غلظت ۵/۰ میلی گرم در لیتر به دست آمد. در حالی که بیشترین شمار ریشه در تیمار BA+IBA با نسبت ۲ به ۱ میلی گرم در لیتر وجود داشت. در مقایسه محیط کشت ها نیز محیط کشت Chenتاثیر بیشتری بر تولید برگ و ریشه داشت. این نتایج نشان داد که موفقیت باززایی رقم های مختلف ارکیده فالانوپسیس در شرایط درون شیشه ای، وابسته به ویژگی های ژنتیکی، نوع محیط کشت و تیمارهای تنظیم کننده رشد است. رقم Nottingham و ریزنمونه های برگی باززایی بهتری در شرایط درون شیشه ای داشت. افزایش غلظت تنظیم کننده رشد سیتوکنینی BA از ۲ به ۴ میلی گرم بر لیتر، منجر به افزایش زمان مورد نیاز برای تشکیل سرآغازه های برگ و ریشه، و طولانی تر شدن دوره کشت درون شیشه ای شد.

تاثیر ژنتیک، نوع ریزنمونه، تنظیم کننده رشد گیاهی و بستر کشت بر باززایی درون شیشه ای رقم های تجاری ارکیده فالانوپسیس Keywords:

Regeneration , Tissue culture , Phalaenopsis , باززایی , ریزافزایی , فالانوپسیس

تاثیر ژنتیک، نوع ریزنمونه، تنظیم کننده رشد گیاهی و بستر کشت بر باززایی درون شیشه ای رقم های تجاری ارکیده فالانوپسیس authors

فاطمه بیدرنامنی

Institute of Agricultural Research

عبدالرحمن رحیمیان بوگر

University of Zabol

سید نجم الدین مرتضوی

Zanjan University

مراجع و منابع این Paper:

لیست زیر مراجع و منابع استفاده شده در این Paper را نمایش می دهد. این مراجع به صورت کاملا ماشینی و بر اساس هوش مصنوعی استخراج شده اند و لذا ممکن است دارای اشکالاتی باشند که به مرور زمان دقت استخراج این محتوا افزایش می یابد. مراجعی که مقالات مربوط به آنها در سیویلیکا نمایه شده و پیدا شده اند، به خود Paper لینک شده اند :

Abbaszadeh, S.M., Miri, S.M., Naderi, R. (۲۰۱۷). An effective nutrient ...

Andarz, Z., Daneshvar, M.H., Yari, F. (۲۰۱۴). Induction of callus ...

Balilashaki, K., Naderi, R., Kalantari, S., Vahedi, M. (۲۰۱۴). PTC ...

Chen, J.T., Chang, W.C. (۲۰۰۶). Direct somatic embryogenesis and plant ...

Chen, J.T., Chang, W.C. (۲۰۰۴). Induction of repetitive embryogenesis from ...

Chen, Y.C., Chang, C., Chang, W.C. (۲۰۰۰). A reliable protocol ...

Chowdhery, H. J. (۲۰۰۱) Orchid diversity in north-east India. Journal ...

Chung, H. H., Cheng, J. T., Chang, W. C. (۲۰۰۷). ...

David, D., Jualang, A.G. Janna, O.A. (۲۰۰۸). Effect of NAA ...

De, L.C. (۲۰۱۵). Commercial Orchids. Berlin: De Gruyter Open. Available ...

Dias, L.L.C., Santa-Catarina, C., Ribeiro, D.M., Barros, R.S., Floh, E.I.S., ...

Dijk, E. (۱۹۸۸) Mykorrhizen der Orchideen. II Die Pilze. Die ...

Gentile, A., Gutierrez, M.J., Martinez, J., Frattarelli, A., Nota, P., ...

Huana, L.V.T., Takamura, T., Tanaka, M. (۲۰۰۴). Callus formation and ...

Kakouei, F., Salehi, H. (۲۰۱۵). Factors affecting in vitro propagation ...

Kohsari, A., Chalavi, V., Akbarpour, V. (۲۰۲۰) Effect of explant ...

Lee, Y.I., Hsu, S.T., Yeung, E.C. (۲۰۱۳). Orchid protocorm- like ...

Mamidala, P., Nanna, R.S. (۲۰۱۱). Effect of genotype, explant source ...

Meng, Y.Y., Song, S.J., Landrein, S. ۲۰۲۱. In vitro organogenesis ...

Moradi, S., Daylami, S.D., Arab, M., Vahdati, K. (۲۰۱۷). Direct ...

Naing, A.H., Chung, J.D., Lim, K.B. (۲۰۱۱). Plant regeneration through ...

Nazemi Rafi, Z., Salehi, H. (۲۰۱۸). Factors affecting in vitro ...

Ozarowski, M., Thiem, B., Gryszczyńska, A., Budzianowski, J. (۲۰۱۳). Studies ...

Pathak, P., Verma, S., Prakash, A., Mahant, K.C. (۲۰۱۷). Regeneration ...

Pipino, L., Braglia, L., Giovannini, A., Fascella, G. (۲۰۱۰). In ...

Ragavendran, C. (۲۰۱۲). In vitro propagation of nodal and shoot ...

Raza, G., Singh, M.B., Bhalla, P.L. (۲۰۱۷). In vitro plant ...

https://doi.org/۱۰.۱۱۵۵/۲۰۱۷/۷۳۷۹۶۹۳Rocha, D.I., Vieira, L.M., Tanaka, F.A.O., Silva, L.C., Otoni, W.C. ...

Roy, J., Banerjee, N. (۲۰۰۳). Induction of callus and plant ...

Sembi, J.K., Pathak, P., Verma, J. (۲۰۲۰). Regeneration competence of ...

Shekhawat, M.S., Kannan, N., Manokari, M., Ravindran, C. P. (۲۰۱۵). ...

Shylaraj, H.S., Deepthy, R., Korah, P.L. (۲۰۰۷). High Frequency Mericloning ...

Sidhu, S. (۲۰۱۰) In vitro micropropagation of medicinal plants by ...

Singh, M.K., Sherpa, A.R., Hallan, V., Zaidi, A.A. (۲۰۰۷). A ...

Ślusarkiewicz-Jarzina, A., Ponitka, A., Kaczmarek, Z. (۲۰۰۵). Influence of cultivar, ...

Solórzano-Cascante, P., Sánchez-Chiang, N., Jiménez, V.M. (۲۰۱۸). Explant type, culture ...

Te-chato, S., Susanon, T., Sontikun, Y. (۲۰۰۶). Cultivar, explant type ...

Te-chato, S., Naksombut, S., Boonsiri, J. (۲۰۰۲). Effect of variety ...

Teixeira da Silva, J.A., Winarto, B. (۲۰۱۶). Somatic Embryogenesis in ...

Vieira, L.M., Rocha, D.I., Taquetti, M.F., da Silva, L. C., ...

Wu, J.F., Chen, J.T., Chang, W.C. (۲۰۰۴). Effects of auxins ...

Zheng, Y.X., Shen, B.N., Chen, C.C., Jan, F.J. (۲۰۱۰). Odontoglossum ...

Abbaszadeh, S.M., Miri, S.M., Naderi, R. (۱۳۹۶). An Effective Nutrient ...

Chen, Y.C., Chang, C., Chang, W.C. (۲۰۰۰). A reliable protocol ...

Chen, J. T., Chang, W. C. (۲۰۰۴). Induction of repetitive ...

Chowdhery, H.J. (۲۰۰۱) Orchid diversity in north-east India. J Orchid ...

Chen, J.T., Chang, W.C. (۲۰۰۶). Direct somatic embryogenesis and plant ...

Chung, H. H., Cheng, J. T., Chang, W. C. (۲۰۰۷). ...

De, L. C. (۲۰۱۵). Commercial orchids. Berlin: De Gruyter Open. ...

Dijk, E. (۱۹۸۸) Mykorrhizen der Orchideen. II Die Pilze. Die ...

Naing, A.H., Chung, J.D., Lim, K.B. (۲۰۱۱). Plant Regeneration through ...

Nazemi Rafi, Z., Salehi, H. (۲۰۱۸). Factors affecting in vitro ...

Raza, G., Singh, M.B., Bhalla, P.L. (۲۰۱۷). In Vitro Plant ...

Shylaraj, H.S., Deepthy, R., Korah, P.L. (۲۰۰۷). High frequency mericloning ...

Sidhu S (۲۰۱۰) In vitro micropropagation of medicinal plants by ...