سیویلیکا را در شبکه های اجتماعی دنبال نمایید.

تاثیر اکتوئین و هیدروکسی اکتوئین خارجی بر برخی فعالیت‏های ضد قارچی سویه Pseudomonas fluorescens UTPF۵ در شرایط شوری

Publish Year: 1395
Type: Journal paper
Language: Persian
View: 371

This Paper With 15 Page And PDF Format Ready To Download

Export:

Link to this Paper:

Document National Code:

JR_BJM-5-17_004

Index date: 1 May 2021

تاثیر اکتوئین و هیدروکسی اکتوئین خارجی بر برخی فعالیت‏های ضد قارچی سویه Pseudomonas fluorescens UTPF۵ در شرایط شوری abstract

مقدمه: باکتری‏های پروبیوتیک گیاهی همچون سودومونادهای فلورسنت با سازوکار‏هایی از قبیل تولید متابولیت‏ها و آنزیم‏ها دارای سابقه طولانی در کنترل زیستی بیمارگر‏های خاکزاد هستند. یکی دیگر از نقش‏های مهم این باکتری‏ها افزایش تحمل گیاه در مقابله با تنش‏های محیطی است. اکتوئینها اسمولیت‏هایی است که نقش مهمی در تحمل به تنش‏های اسمزی محیط ایفا می‏کند. ‏‏‏ مواد و روش ‏‏ها: میزان تحمل ۲۴ سویه باکتری پروبیوتیک گیاهی به شوری و دما تعیین و تعداد ۶ سویه متحمل برای انجام آزمایشات بعدی انتخاب شد. در مرحله بعد، آزمون کشت متقابل قارچ فوزاریوم سولانی و باکتری‏های رشد یافته در حضور اکتوئین و هیدروکسی‏اکتوئین به همراه سه غلظت کلرید سدیم انجام و یک سویه از سودوموناس فلورسنس (UTPF۵) انتخاب شد. در نهایت، تاثیر اکتوئین، هیدروکسی‏اکتوئین و سه غلظت مختلف نمک بر جمعیت باکتری، تولید لیپاز، پروتئاز، سیانید هیدروژن، سیدروفور و بیوفیلم تعیین شد. ‏‏‏ نتایج: در غلظت ۳۰۰ میلی‏مولار کلرید سدیم، باکتری رشد یافته در حضور اکتوئین و هیدروکسی‏اکتوئین درصد بازدارندگی از رشد قارچ را نسبت به شاهد پنج برابر افزایش داد. شوری بر جمعیت باکتری در تیمارهای آب مقطر و اکتوئین، تولید سیانید‏ هیدروژن در هر سه تیمار و تشکیل بیوفیلم در تیمارهای اکتوئین و هیدروکسی‏اکتوئین تاثیر مثبت و بر جمعیت باکتری در تیمار هیدروکسی‏اکتوئین، تولید پروتئاز و سیدروفور در هر سه تیمار و تشکیل بیوفیلم در آب مقطر تاثیر منفی داشت. از طرف دیگر اکتوئین جمعیت باکتری، تولید لیپاز و تولید سیانید هیدروژن را در هر سه غلظت کلرید سدیم، تولید سیدروفور را در غلظت ۱۵۰ میلی‏مولار و تشکیل بیوفیلم را در غلظت ۱۵۰ و ۳۰۰ میلی‏مولار افزایش و تولید پروتئاز را در هر سه غلظت کلرید سدیم و تشکیل بیوفیلم را در محیط بدون نمک کاهش داد. هیدروکسی‏اکتوئین تاثیراتی شبیه به اکتوئین با تفاوت‏های جزیی داشت. ‏‏‏ بحث و نتیجه‏ گیری: اکتوئین و هیدروکسی‏اکتوئین با تاثیر بر تولید لیپاز، سیانید هیدروژن و تشکیل بیوفیلم موجب تعدیل کاهش کنترل زیستی ایجاد شده در اثر شوری می‏شوند. 

تاثیر اکتوئین و هیدروکسی اکتوئین خارجی بر برخی فعالیت‏های ضد قارچی سویه Pseudomonas fluorescens UTPF۵ در شرایط شوری Keywords:

تاثیر اکتوئین و هیدروکسی اکتوئین خارجی بر برخی فعالیت‏های ضد قارچی سویه Pseudomonas fluorescens UTPF۵ در شرایط شوری authors

ارغوان کمالی

دانشجوی دکتری کنترل زیستی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران

مسعود احمدزاده

استاد کنترل زیستی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران

اکرم صادقی

استادیار ژنتیک مولکولی، پژوهشکده پژوهشکده بیوتکنولوژی کشاورزی ایران،کرج، ایران

ابراهیم کریمی

کارشناس ارشد بیماریشناسی گیاهی، پژوهشکده بیوتکنولوژی کشاورزی ایران، کرج، ایران

مراجع و منابع این Paper:

لیست زیر مراجع و منابع استفاده شده در این Paper را نمایش می دهد. این مراجع به صورت کاملا ماشینی و بر اساس هوش مصنوعی استخراج شده اند و لذا ممکن است دارای اشکالاتی باشند که به مرور زمان دقت استخراج این محتوا افزایش می یابد. مراجعی که مقالات مربوط به آنها در سیویلیکا نمایه شده و پیدا شده اند، به خود Paper لینک شده اند :
(1) Weller DM., Raaijmakers JM., McSpadden- Gardener BB., Thomashow LS. ...
(2) Beneduzi A., Ambrosini A., Passaglia LMP. Plant growth-promoting rhizobacteria ...
(3) Haas D., Defago G. Biological control of soil-borne pathogens ...
(4) O’Sullivan DJ., O’Gara F. Traits of fluorescent Pseudomonas spp. ...
(5) Glick BR. The enhancement of plant-growth by free living ...
(6) Vidhysaekaran P., Muthamilan M. Evaluation of a powder formulation ...
(7) Kloepper JW., Leong J., Teintze M., Schroth MN. Pseudomonas ...
(8) Thomashow LS., Weller DM. Role of antibiotics and siderophores ...
(9) Keel C., Voisard C., Berling CH., Kahr G., Défago ...
(10) Nielsen MN., Sorensen J. Chitinolytic activity of Pseudomonas fluorescens ...
(11) Bogino PC., Oliva Mde L., Sorroche FG., Giordano W. ...
(12) Whipps JM. Microbial interactions and biocontrol in the rhizosphere. ...
(13) Blumer C., Haas D. Mechanism, regulation, and ecological role ...
(14) Ahmadzadeh M. Biological control of plant diseases: plant probiotic ...
(15) Khmelenina VN., Mustakhimov II., Reshetnikov AS., Kalyuzhnaya MG., Trotsenko ...
(16) Galinski EA., Pfeiffer HP., Truper HG. 1, 4, 5, ...
(17) Sadeghi A., Soltani BM., Khayam nekouie M., Salehi Jouzani ...
(18) Pastor JM., Salvador M., Argandona M., Bernal V., Reina- ...
(19) Afsharmanesh H., Ahmadzadesh M., Javan Nikkah M., Behboudi K. ...
(20) Keel C., Weller DM., Natsch A., D´efago G., Cook ...
(21) Schaad NW., Jonse JB., Chun W. Laboratory guide for ...
(22) Maurhofer M., Keel C., Defago G. Infuence of plant ...
(23) Alstrom S., Burns RG. Cyanide production by rhizobacteria as ...
(24) Castaneda GC., Munoz TJJ., Videa JRP. A spectrophotometric method ...
(25) Fletcher M. The effects of culture concentration and age, ...
(26) Khare E., Singh S., Maheshwari D K., Arora NK. ...
(27) Tewari S., Arora NK. Multifunctional exopolysaccharides from Pseudomonas aeruginosa ...
(28) Principe A., Alvarez F., Castro MG., Zachi L., Fischer ...
(29) Kumar GP., MH Ahmad SK., Desai S., Amalraj ELD., ...
(30) Rangarajan S., Saleena LM., Vasudevan P., Nair S. Biological ...
(31) Karimi E., Sadeghi A., Abbaszade-Dehaji P., Dalvand Y., Omidvari ...
(32) Deshwal VK., Kumar P. Effect of salinity on growth ...
(33) Tank N., Saraf M. Salinity-resistant plant growth promoting rhizobacteria ...
نمایش کامل مراجع