بررسی اثر لاکتوفرین آزاد و نانولیپوزومی بر بیوفیلم پلی میکروبی مشتق شده از بزاق در مدل Active Attachment biofilm

Publish Year: 1402
نوع سند: مقاله ژورنالی
زبان: Persian
View: 56

This Paper With 12 Page And PDF Format Ready To Download

  • Certificate
  • من نویسنده این مقاله هستم

استخراج به نرم افزارهای پژوهشی:

لینک ثابت به این Paper:

شناسه ملی سند علمی:

JR_FSCT-20-136_003

تاریخ نمایه سازی: 30 آبان 1402

Abstract:

پوسیدگی دندان از مشکلات رایج در دنیا می باشد که ناشی از رشد بیوفیلم پوسیدگی زا وتولید اسید توسط آنان است. برای حل این مشکل راهکارهای متعددی به کار گرفته شده است. اما به دلیل افزایش مقاومت آنتی بیوتیکی میکروارگانیسم ها و نیاز روز افزون به مواد ضد میکروبی تلاش برای استفاده  از مواد مواد ضدمیکروبی طبیعی ادامه دارد. لاکتوفرین یک پروتئین در شیر و بزاق است که خواص ضد میکروبی و ضد بیوفیلمی نشان داده است. در این تحقیق ابتدا برای افزایش ویژگی ها ضد میکروبی، لاکتوفرین به وسیله نانولیپوزوم ریزپوشانی شد. سپس جهت سنجش  تاثیر آن بر  تعداد باکتری در بیوفیلم پلی میکروبی و تولید اسید، هریک از مواد آزاد یا نانولیپوزومی در۴ غلظت (۰, ۱.۵, ۳, ۶ میلی گرم بر میلی لیتر) در مدل Active Attachment biofilm  به همراه بزاق و محیط کشت گرمخانه گذاری شد. نتایج نشان داد که نانوریزپوشانی لاکتوفرین به دلیل رهایش آهسته لاکتوفرین از لیپوزوم ها  توانایی مهار بیوفیلم و تولید اسید توسط این باکتری را افزایش داد. تبا افزایش غلظت لاکتوفرین آزاد و نانولیپوزومی تا غلظت ۳ میلی گرم بر میلی لیتر  کاهش قابل توجهی در تعداد باکتری ها در بیوفیلم نسبت به نمونه شاهد مشاهده شد  (۰۱/۰< P).  اما افزایش بیشتر غلظت لاکتوفرین آزاد موجب افزایش مجدد تعداد باکتری ها در بیوفیلم شد. این درحالیست که لاکتوفرین نانولیپوزومی در غلظت ۶ میلی گرم بر میلی لیتر همچنان باعث کاهش باکتری در بیوفیلم شد که این کاهش نسبت به غلظت ۳میلی گرم بر میلی لیتر معنی دار نبود (۰۱/۰> P). از نتایج بدست آمده می توان نتیجه گرفت که از لاکتوفرین نانولیپوزومی می توان جهت  طراحی محصولات مرتبط با سلامت دهان و دندان استفاده کرد.

Authors

Parisa Habibi

Ph.D. student of Ferdowsi University

farideh tabatabaei yazdi

Professor of Ferdowsi university

Seyyed Ali Mortazavi

Professor of Ferdowsi university

Mohammad Morad Farajollahi

Professor of Iran University of Medical Sciences

مراجع و منابع این Paper:

لیست زیر مراجع و منابع استفاده شده در این Paper را نمایش می دهد. این مراجع به صورت کاملا ماشینی و بر اساس هوش مصنوعی استخراج شده اند و لذا ممکن است دارای اشکالاتی باشند که به مرور زمان دقت استخراج این محتوا افزایش می یابد. مراجعی که مقالات مربوط به آنها در سیویلیکا نمایه شده و پیدا شده اند، به خود Paper لینک شده اند :
  • Amissah, F., T. Andey, and K.M. Ahlschwede, Nanotechnology-based therapies for ...
  • Dewhirst, F.E., et al., The human oral microbiome. Journal of ...
  • Scharnow, A.M., A.E. Solinski, and W.M. Wuest, Targeting S. mutans ...
  • Donlan, R.M., Biofilms: microbial life on surfaces. Emerging infectious diseases, ...
  • Jamal, M., et al., Bacterial Biofilm: Its Composition. Formation and ...
  • Rosa, L., et al., Lactoferrin and oral pathologies: a therapeutic ...
  • Lemos, J., et al., The biology of Streptococcus mutans. Microbiology ...
  • Lemos, J.A. and R.A. Burne, A model of efficiency: stress ...
  • Gilbert, J.A., et al., Current understanding of the human microbiome. ...
  • Kandimalla, K.K., et al., Ability of chitosan gels to disrupt ...
  • Krupińska, A.M. and Z. Bogucki, Clinical aspects of the use ...
  • Leitch, E. and M. Willcox, Elucidation of the antistaphylococcal action ...
  • Pedersen, A.M.L. and D. Belstrøm, The role of natural salivary ...
  • Oho, T., et al., A peptide domain of bovine milk ...
  • Bjarnsholt, T., et al., Pseudomonas aeruginosa tolerance to tobramycin, hydrogen ...
  • Ceri, H., et al., The Calgary Biofilm Device: new technology ...
  • Donlan, R.M. and J.W. Costerton, Biofilms: survival mechanisms of clinically ...
  • Tenover, F.C., Mechanisms of antimicrobial resistance in bacteria. The American ...
  • Burmølle, M., et al., Enhanced biofilm formation and increased resistance ...
  • Kara, D., S.B. Luppens, and J.M. ten Cate, Differences between ...
  • Luppens, S., et al., Effect of Veillonella parvula on the ...
  • Ramsey, M.M. and M. Whiteley, Polymicrobial interactions stimulate resistance to ...
  • Pamunuwa, G., V. Karunaratne, and D. Karunaratne, Effect of lipid ...
  • Cacciotti, I., et al., Application of nano/microencapsulated ingredients in chewing ...
  • Dera, M.W. and W.B. Teseme, Review on the application of ...
  • Bonifacio, B.V., et al., Nanotechnology-based drug delivery systems and herbal ...
  • Liu, W., et al., Stability during in vitro digestion of ...
  • Rasti, B., et al., Comparative study of the oxidative and ...
  • Habibi, P., et al., Effects of free and nano‐encapsulated bovine ...
  • Vergara, D. and C. Shene, Encapsulation of lactoferrin into rapeseed ...
  • Exterkate, R., W. Crielaard, and J. Ten Cate, Different response ...
  • McBain, A., et al., Development and characterization of a simple ...
  • Van Loveren, C., J. Buijs, and J. Ten Cate, The ...
  • Silva, T.C., et al., Application of an active attachment model ...
  • Consortium, H.M.P., Huttenhower C, Gevers D, Knight R, Abubucker S, ...
  • Mark-Welsh, J., et al., Biogeography of a human oral microbiome ...
  • Visca, P., et al., Growth and adsorption of Streptococcus mutans ...
  • lactoferrin. Medical microbiology and immunology, ۱۹۸۹. ۱۷۸(۲): p. ۶۹-۷۹ ...
  • Oho, T., M. Mitoma, and T. Koga, Functional domain of ...
  • Rosa, L., et al., Lactoferrin: a natural glycoprotein involved in ...
  • Longhi, C., et al., Influence of lactoferrin on the entry ...
  • Dalmastri, C., et al., Enhanced antimicrobial activity of lactoferrin by ...
  • Williams, T.J., R.P. Schneider, and M.D. Willcox, The effect of ...
  • Kawasaki, Y., et al., Inhibitory effects of bovine lactoferrin on ...
  • Dial, E.J. and L.M. Lichtenberger, Effect of lactoferrin on Helicobacter ...
  • Lu, J., et al., Lactoferrin: a critical mediator of both ...
  • Ochoa, T.J., et al., Lactoferrin impairs type III secretory system ...
  • Hendrixson, D., et al., Human milk lactoferrin is a serine ...
  • Rose, J.E., D.H. Meyer, and P.M. Fives-Taylor, Aae, an autotransporter ...
  • Wakabayashi, H., et al., Inhibitory effects of lactoferrin on growth ...
  • Eriksson, E. and E. Erlandsson, Inhibitory Properties of Lactoferrin on ...
  • Morita, Y., et al., Effects of lactoferrin and lactoperoxidase‐containing food ...
  • Arslan, S., K. Leung, and C. Wu, The effect of ...
  • Singh, P.K., Iron sequestration by human lactoferrin stimulates P. aeruginosa ...
  • Morrissey, P.E., et al., Inhibition of Streptococcus mutans binding to ...
  • Niemi, L.D., O. Hernell, and I. Johansson, Human milk compounds ...
  • Allison, L.M., et al., Effect of human milk and its ...
  • Gudipaneni, R.K., et al., Short term comparative evaluation of antimicrobial ...
  • Shin, K., et al., Effects of a composition containing lactoferrin ...
  • Francesca, B., et al., Both lactoferrin and iron influence aggregation ...
  • Alarfaj, R.E., et al., Antibacterial Efficacy of Liposomal Formulations Containing ...
  • Yamakami, K., et al., Sustainable inhibition efficacy of liposome-encapsulated nisin ...
  • Ashrafi, B., et al., Mentha piperita essential oils loaded in ...
  • Karimi, N., et al., Thymol, cardamom and Lactobacillus plantarum nanoparticles ...
  • Kaeriyama, E., et al., Effect of bovine lactoferrin on enamel ...
  • Amissah, F., T. Andey, and K.M. Ahlschwede, Nanotechnology-based therapies for ...
  • Scharnow, A.M., A.E. Solinski, and W.M. Wuest, Targeting S. mutans ...
  • Donlan, R.M., Biofilms: microbial life on surfaces. Emerging infectious diseases, ...
  • Jamal, M., et al., Bacterial Biofilm: Its Composition. Formation and ...
  • Rosa, L., et al., Lactoferrin and oral pathologies: a therapeutic ...
  • Lemos, J., et al., The biology of Streptococcus mutans. Microbiology ...
  • Lemos, J.A. and R.A. Burne, A model of efficiency: stress ...
  • Gilbert, J.A., et al., Current understanding of the human microbiome. ...
  • Kandimalla, K.K., et al., Ability of chitosan gels to disrupt ...
  • Krupińska, A.M. and Z. Bogucki, Clinical aspects of the use ...
  • Leitch, E. and M. Willcox, Elucidation of the antistaphylococcal action ...
  • Pedersen, A.M.L. and D. Belstrøm, The role of natural salivary ...
  • Oho, T., et al., A peptide domain of bovine milk ...
  • Bjarnsholt, T., et al., Pseudomonas aeruginosa tolerance to tobramycin, hydrogen ...
  • Ceri, H., et al., The Calgary Biofilm Device: new technology ...
  • Donlan, R.M. and J.W. Costerton, Biofilms: survival mechanisms of clinically ...
  • Tenover, F.C., Mechanisms of antimicrobial resistance in bacteria. The American ...
  • Burmølle, M., et al., Enhanced biofilm formation and increased resistance ...
  • Kara, D., S.B. Luppens, and J.M. ten Cate, Differences between ...
  • Luppens, S., et al., Effect of Veillonella parvula on the ...
  • Ramsey, M.M. and M. Whiteley, Polymicrobial interactions stimulate resistance to ...
  • Pamunuwa, G., V. Karunaratne, and D. Karunaratne, Effect of lipid ...
  • Cacciotti, I., et al., Application of nano/microencapsulated ingredients in chewing ...
  • Dera, M.W. and W.B. Teseme, Review on the application of ...
  • Bonifacio, B.V., et al., Nanotechnology-based drug delivery systems and herbal ...
  • Liu, W., et al., Stability during in vitro digestion of ...
  • Rasti, B., et al., Comparative study of the oxidative and ...
  • Habibi, P., et al., Effects of free and nano‐encapsulated bovine ...
  • Vergara, D. and C. Shene, Encapsulation of lactoferrin into rapeseed ...
  • Exterkate, R., W. Crielaard, and J. Ten Cate, Different response ...
  • McBain, A., et al., Development and characterization of a simple ...
  • Van Loveren, C., J. Buijs, and J. Ten Cate, The ...
  • Silva, T.C., et al., Application of an active attachment model ...
  • Consortium, H.M.P., Huttenhower C, Gevers D, Knight R, Abubucker S, ...
  • Mark-Welsh, J., et al., Biogeography of a human oral microbiome ...
  • Visca, P., et al., Growth and adsorption of Streptococcus mutans ...
  • lactoferrin. Medical microbiology and immunology, ۱۹۸۹. ۱۷۸(۲): p. ۶۹-۷۹ ...
  • Oho, T., M. Mitoma, and T. Koga, Functional domain of ...
  • Rosa, L., et al., Lactoferrin: a natural glycoprotein involved in ...
  • Longhi, C., et al., Influence of lactoferrin on the entry ...
  • Dalmastri, C., et al., Enhanced antimicrobial activity of lactoferrin by ...
  • Williams, T.J., R.P. Schneider, and M.D. Willcox, The effect of ...
  • Kawasaki, Y., et al., Inhibitory effects of bovine lactoferrin on ...
  • Dial, E.J. and L.M. Lichtenberger, Effect of lactoferrin on Helicobacter ...
  • Lu, J., et al., Lactoferrin: a critical mediator of both ...
  • Ochoa, T.J., et al., Lactoferrin impairs type III secretory system ...
  • Hendrixson, D., et al., Human milk lactoferrin is a serine ...
  • Rose, J.E., D.H. Meyer, and P.M. Fives-Taylor, Aae, an autotransporter ...
  • Wakabayashi, H., et al., Inhibitory effects of lactoferrin on growth ...
  • Eriksson, E. and E. Erlandsson, Inhibitory Properties of Lactoferrin on ...
  • Morita, Y., et al., Effects of lactoferrin and lactoperoxidase‐containing food ...
  • Arslan, S., K. Leung, and C. Wu, The effect of ...
  • Singh, P.K., Iron sequestration by human lactoferrin stimulates P. aeruginosa ...
  • Morrissey, P.E., et al., Inhibition of Streptococcus mutans binding to ...
  • Niemi, L.D., O. Hernell, and I. Johansson, Human milk compounds ...
  • Allison, L.M., et al., Effect of human milk and its ...
  • Gudipaneni, R.K., et al., Short term comparative evaluation of antimicrobial ...
  • Shin, K., et al., Effects of a composition containing lactoferrin ...
  • Francesca, B., et al., Both lactoferrin and iron influence aggregation ...
  • Alarfaj, R.E., et al., Antibacterial Efficacy of Liposomal Formulations Containing ...
  • Yamakami, K., et al., Sustainable inhibition efficacy of liposome-encapsulated nisin ...
  • Ashrafi, B., et al., Mentha piperita essential oils loaded in ...
  • Karimi, N., et al., Thymol, cardamom and Lactobacillus plantarum nanoparticles ...
  • Kaeriyama, E., et al., Effect of bovine lactoferrin on enamel ...
  • نمایش کامل مراجع