اثر نوع هورمون و غلظت محیط پایه بر جوانه زنی و پرآوری ریز نمونه های رز ساناز (Rosa chinensis var. Elvis)

Publish Year: 1395
نوع سند: مقاله ژورنالی
زبان: Persian
View: 400

This Paper With 16 Page And PDF Format Ready To Download

  • Certificate
  • من نویسنده این مقاله هستم

استخراج به نرم افزارهای پژوهشی:

لینک ثابت به این Paper:

شناسه ملی سند علمی:

JR_JOPP-23-4_004

تاریخ نمایه سازی: 11 آبان 1398

Abstract:

چکیده: سابقه و هدف: گل رز به عنوان ملکه گل ها از عهد باستان مورد توجه بشر بوده است. در حال حاضر یکی از محبوب ترین گل های جهان است و از لحاظ میزان تولید در صدر قرار دارد. رز ساناز یکی از انواع رز های زینتی است که امروزه به مقدار گسترده ای در فضای سبز و پارک ها مورد استفاده قرار می گیرد. رز ساناز (Rosa chinensis var. Elvis) یکی از چندین گونه رز کشور ماست که پایه های آن را به وسیله روش های سنتی تکثیر و در بازار به فروش می رسانند. از آن جایی که تولید آن از طریق روش های سنتی با محدودیت زمانی و کمبود پایه های پیوندی همراه است، این تحقیق، به دنبال تعیین شرایط بهینه ریز ازدیادی گونه رز رقم ساناز از طریق روش کشت بافت می باشد. مواد و روش ها: به منظور تکثیر این گونه، جوانه های جانبی و انتهایی شاخه های تهیه شده از نهال های پرورش یافته در گلدان به عنوان ریزنمونه استفاده شد. محیط های مورد بررسی جهت پرآوری و باززایی شامل محیط MS، MS/2 و MS/4 بود. هورمون های مورد استفاده شامل هورمون 6- بنزیل آمینو پورین (BAP) با غلظت های 0 ، 1، 3 و 5 میلی گرم در لیتر و هورمون ایندول بوتیریک اسید (IBA) با غلظت های 0، 1/0 ، 3/0و 5/0 میلی گرم در لیتر می باشد. آزمایش به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملا تصادفی با سه تکرار انجام گرفت و هر تکرار شامل 5 ریزنمونه بود. یافته ها: نتایج نشان داد که بستر MS دارای بیشترین درصد باززایی و ترکیب تیمار بستر MS تمام غلظت، همراه با 3 میلی گرم در لیتر هورمون BAP بیشترین باززایی را به خود اختصاص داده است. بیشترین مقدار شاخه زایی در غلظت 5 میلی گرم در لیتر BAP حاصل شد. ترکیب تیمار محیط پایه MS/4 همراه با 5 میلی گرم در لیتر BAP و محیط پایه MS/4 همراه با 5/0 میلی گرم در لیترIBA و 5 میلی گرم در لیتر BAP بیشترین شاخه زایی را از خود نشان دادند. محیط MS/4 حاوی 5/0 میلی گرم در لیتر IBA و 5 میلی گرم در لیتر BAP دارای کمترین و محیط MS فاقد هورمون، بیشترین طول شاخه را داشتند. شاخه های تولیدی با موفقیت ریشه دار شدند. سپس گیاهچه های ریشه دار شده به شرایط خارج از آزمایشگاه منتقل و سازگار شدند. نتیجه گیری: با توجه به نتایج حاصل از تحقیق می توان گفت که محیط پایهMS تمام غلظت محیط مناسبی برای گونه رز ساناز می باشد. گونه ساناز در غلظت های نسبتا بالای سیتوکینین (BAP) از باززایی و شاخه زایی نسبتا بالایی برخوردار است. با افزایش میزان سیتوکینین محیط تعداد شاخه های ایجاد شده افزایش یافت اما طول شاخه ها کاهش یافت. بیشترین رشد شاخه ها در محیط فاقد هورمون اتفاق افتاد.

Authors

مهدی درودی

دانش آموخته کارشناسی ارشد فیزیولوژی گیاهی

محمدرضا واعظی کاخکی

عضو هیات علمی دانشگاه سبزوار

اکبر صفی پور افشار

عضو هیات علمی دانشگاه آزاد اسلامی نیشابور

مراجع و منابع این Paper:

لیست زیر مراجع و منابع استفاده شده در این Paper را نمایش می دهد. این مراجع به صورت کاملا ماشینی و بر اساس هوش مصنوعی استخراج شده اند و لذا ممکن است دارای اشکالاتی باشند که به مرور زمان دقت استخراج این محتوا افزایش می یابد. مراجعی که مقالات مربوط به آنها در سیویلیکا نمایه شده و پیدا شده اند، به خود Paper لینک شده اند :
  • Arnold, N., Binns, P., Barthakur, M.R. and Clouter, D.C. 1992. ...
  • Bar-Yousef, B., Kafkafi, U. and Bresler, E. 1995. Uptake of ...
  • Caliskan, M., and Agaoglu, Y.S. 2009. Molecular Characterization of Rose ...
  • Carelli, B.P. and Echeverrigaray, S. 2002. An improved system for ...
  • Darroudi, H., Akbarinia, M., Safarnejad, A., Hosseini, S.M. and Hajian ...
  • Goncalves, S., Correia, P.J., Martins-Loucao, M.A., and Romano, A. 2005. ...
  • Hajnajjari, H. 1994. Micropropagation. Research Institute of Forest and Rangelands ...
  • Hong, Z. 1996. Tissue culture of Rosa chinensis var Floribunda. ...
  • Horn, W.A.H. 1992. Micropropagation of rose. In: Bajaj, Y.P.S. (Ed.), ...
  • Jabbarzadeh, Z., and Khush-Khui, M. 2005. Factor affecting tissue culture ...
  • Kadota, M. and Niimi, Y. 2003. Effects of cytokinin types ...
  • Karimi, M., De Meyer, B. and Hilson, P. 2005. Modular ...
  • Khosh-Khui, M, Honarvar, M. and Javidnia, K. 2010. The first ...
  • Khosravi, P., Jafarkhani Kermani, M., Nematzadeh, G.H. and Bihamta, M. ...
  • Kim, C.K., Oh, J.Y., Jee, S.O. and Chung, J.D. 2003. ...
  • Mahdavi Mashaki, K., Moieni, A. and Jalali Javaran, M. 2014. ...
  • Mahdvian, M., Bozari, N. and Abdollahi, H. 2010. Effects of ...
  • Misra, P. and Chakrabarty, D. 2009. Clonal propagation of Rosa ...
  • Orlikowska, T. 1984. Micropropagation of Roodknop cv. black currant. Fruit ...
  • Osareh, M.H., Ghorbanly, M., Mamaghani, B., Ghamarizare, A. and Shahrzad, ...
  • Ruzic, D. and Lazic, T. 2006. Micro propagation as means ...
  • Salehi, H. and Khosh-Khuy, M. 2003. Callus induction and growth ...
  • Shirzad Khorram abadi, R. and Lotfi, N. 2003. micropropagation of ...
  • Sotiropoulos, T.E., Mouhtaridou, G.N., Thomidis, T.V, Tsirakoglou, K.N, Dimassi, I. ...
  • Tomas, W., Motyka, V., Strnad, M. and Schmulling, T. 2001. ...
  • Toriyama, K. and Hinata, K. 1995. Cell suspension and protoplast ...
  • Yadollahi, A., Omidi, M. and Eftekhari, M. 2015. Effect of ...
  • Zheng-Hua, Y. 2002. Vascular tissue differentiation and pattern formation in ...
  • نمایش کامل مراجع