سیویلیکا را در شبکه های اجتماعی دنبال نمایید.

اثر حفاظتی ترکیبی ویبریو پاراهمولیتیکوس غیرفعال و ویروس سندروم لکه سفید پرتوتابی شده بر میگو وانامی به دو روش تزریقی و حمامی

Publish Year: 1402
Type: Journal paper
Language: Persian
View: 274

This Paper With 8 Page And PDF Format Ready To Download

این Paper در بخشهای موضوعی زیر دسته بندی شده است:

Export:

Link to this Paper:

Document National Code:

JR_JONSAT-44-4_018

Index date: 27 September 2023

اثر حفاظتی ترکیبی ویبریو پاراهمولیتیکوس غیرفعال و ویروس سندروم لکه سفید پرتوتابی شده بر میگو وانامی به دو روش تزریقی و حمامی abstract

ویروس سندرم لکه سفید یکی از عوامل عفونت زای مهم میگو می باشد. در این تحقیق، از نمونه های میگو عفونی و جمع آوری شده از مزارع میگو استان بوشهر، ویروس سندروم  لکه سفید جداسازی و در همولنف خرچنگ دراز تکثیر و از طریق آزمون PCR وجود ویروس تایید گردید. تیتراسیون ویروس در پست لاروهای میگو به روش کربر /ml۵۰LD ۱۰۵.۴ محاسبه و غیرفعال سازی با بیم الکترون انجام شد. ارزش ۱۰D و دز مطلوب پرتو الکترون برای غیرفعال سازی این ویروس به ترتیب ۸۵/۱ و ۱۳ کیلوگری به دست آمد. ویروس پرتوتابی شده با الکترون به عنوان واکسن- الکترون و باکتری ویبریوپاراهمولیتیکوس پرتوتابی شده به عنوان محرک برای ایمن سازی میگو وانامی استفاده شدند. دز حفاظتی ۵۰ % برای گروه های دریافت کننده واکسن الکترون، واکسن الکترون همراه با باکتری ویبریو پرتوتابی شده و گروه دریافت کننده باکتری ویبریو پرتوتابی شده به تنهایی در روش تزریقی به ترتیب ۶۲/۵، ۳۰/۶ و ۸۷/۲ محاسبه شد. درصد بقا نسبی این سه گروه در روش تزریقی به ترتیب ۶۴ %، ۷۲ % و ۲۲ % و در روش حمامی به ترتیب ۷۵ %، ۸۵ % و ۵/۱۲ % محاسبه شد. با توجه به نتایج آزمون مواجهه دو گروه ۱ و ۲ در مقابل ویروس زنده اثر حفاظتی خوبی نشان دادند. لذا نتیجه گیری می شود که باکتری ویبریو پاراهمولیتیکوس پرتوتابی شده می تواند به عنوان یک محرک ایمنی اثر حفاظتی واکسن- الکترون را در میگوها تقویت نماید. هم چنین هر دو روش تزریقی و حمامی برای واکسیناسیون میگوها بدون اختلاف معنی دار در درصد بقا نسبی مناسب می باشند.

اثر حفاظتی ترکیبی ویبریو پاراهمولیتیکوس غیرفعال و ویروس سندروم لکه سفید پرتوتابی شده بر میگو وانامی به دو روش تزریقی و حمامی Keywords:

اثر حفاظتی ترکیبی ویبریو پاراهمولیتیکوس غیرفعال و ویروس سندروم لکه سفید پرتوتابی شده بر میگو وانامی به دو روش تزریقی و حمامی authors

فرحناز معتمدی سده

پژوهشکده ی کشاورزی هسته ای، پژوهشگاه علوم و فنون هسته ای، سازمان انرژی اتمی، صندوق پستی: ۱۴۹۸-۳۱۴۸۵، کرج- ایران

رضا روشن

پژوهشکده ی کشاورزی هسته ای، پژوهشگاه علوم و فنون هسته ای، سازمان انرژی اتمی، صندوق پستی: ۱۴۹۸-۳۱۴۸۵، کرج- ایران

مراجع و منابع این Paper:

لیست زیر مراجع و منابع استفاده شده در این Paper را نمایش می دهد. این مراجع به صورت کاملا ماشینی و بر اساس هوش مصنوعی استخراج شده اند و لذا ممکن است دارای اشکالاتی باشند که به مرور زمان دقت استخراج این محتوا افزایش می یابد. مراجعی که مقالات مربوط به آنها در سیویلیکا نمایه شده و پیدا شده اند، به خود Paper لینک شده اند :
Sánchez‐Martínez, J.G., G. Aguirre‐Guzmán, H. Mejía‐Ruíz, White spot syndrome virus ...
P.S. Mead, et al., Food-related illness and death in the ...
L. Beuchat, Combined effects of water activity, solute, and temperature ...
C. Pruzzo, et al., Pathogenic Vibrio species in the marine ...
H.-C. Wong, et al., Incidence of highly genetically diversified Vibrio ...
B.A. Akhoundzadeh, et al., The study of Vibrio SPP. In ...
D. Chen, P. Hanna, Immunodetection of specific Vibrio bacteria attaching ...
G. Nash, Vibriosis and its control in pond-reared Penaeus monodon ...
M. Alsharifi, A. Müllbacher, The [gamma]-irradiated influenza vaccine and the ...
B. Raie Jadidi, H. Erfan-Niya, A. Ameghi, Optimizing the process ...
M. Alsharifi, et al., Intranasal flu vaccine protective against seasonal ...
A.J. Hume, et al., Inactivation of RNA viruses by gamma ...
S. Javan, et al., Evaluation of immune responses and histopathological ...
F. Motamedi Sedeh, et al., Improved Whole Gamma Irradiated Avian ...
F. Motamedi‐Ssedeh, et al., Carboxymethyl chitosan bounded iron oxide nanoparticles ...
M. Afsharnasab, et al., Incidence of white spot disease (WSD) ...
M. Afsharnasab, et al., Gross sign, histopathology and polymerase chain ...
H. Du, et al., Increased resistance to white spot syndrome ...
M. Heidareh, et al., White spot syndrome virus inactivation study ...
M.C. Van Hulten, et al., White spot syndrome virus envelope ...
J. Witteveldt, et al., Protection of Penaeus monodon against white ...
A. Namikoshi, et al., Vaccination trials with Penaeus japonicus to ...
F.M. Sedeh, et al., Preparation of FMD type A۸۷/IRN inactivated ...
G. Karber, Foot and Mouth Disease, Karber Formula for calculation ...
M. Heidarieh, et al, Immunization of Shrimp by Irradiated Vibrio ...
F. Motamedi-Sedeh, et al, Protection of Litopenaeus vannamei against white ...
H. Bahnemann, Binary ethylenimine as an inactivant for foot-and-mouth disease ...
H.G. Bahnemann, Inactivation of viral antigens for vaccine preparation with ...
F. Brown, et al., The use of acetylethyleneimine in the ...
T. Grieb, et al., Effective use of gamma irradiation for ...
J. Lombardo, E. Smolko, A biotechnological project with a gamma ...
J.R. Polley, Factors influencing inactivation of infectivity and hemagglutinin of ...
C. Kaplan, The antigenicity of γ-irradiated vaccinia virus, Epidemiology & ...
M. Reitman, H.R. Tribble Jr, Inactivation of Venezuelan Equine Encephalomyelitis ...
M. Reitman, H.R. Tribble Jr, L. Green, Gamma-irradiated Venezuelan equine ...
E. Pollard, The action of ionizing radiation on viruses, in ...
W. Ginoza, Inactivation of viruses by ionizing radiation and by ...
E.E. Smolko, J.H. Lombardo, Virus inactivation studies using ion beams, ...
T. Preuss, et al., Comparison of two different methods for ...
نمایش کامل مراجع